Возможности ПЭТ/КТ с 18F-холином при глиальных опухолях
https://doi.org/10.37174/2587-7593-2018-1-1-19-23
Аннотация
Цель: Оценить диагностическую ценность метода позитронной эмиссионной томографии (ПЭТ) с 18F-холином у больных с глиальными опухолями головного мозга.
Материал и методы: В исследование включены результаты исследований ПЭТ/КТ и МРТ 30 пациентов с внутримозговыми опухолями: глиобластомы – у 9 (30 %), анапластические астроцитомы – у 9 (30 %), глиомы GrII – у 7 (23,3 %), доброкачественные астроцитомы GrI – у 5 (16,7 %). Всем пациентам было выполнено ПЭТ/КТ-исследование с 18F-холином и минимум два исследования МРТ в динамике. ПЭТ/КТ проводили на аппарате Biograph mCT Siemens (КТ – 300 мА, 120 кВ, КТ в спиральном режиме: шаг среза при реконструкции 1,2 мм, ПЭТ – на 4-рядном кольце детекторов на основе ортосиликата лютеция (48 блоков на каждый), ширина одной зоны сканирования (slab) 21,6 см, время сканирования на первом этапе 5 мин/slab, на втором – 10 мин/slab). Первый этап проводили сразу после внутривенного введения радиофармпрепарата (РФП) с помощью автоматического инжектора для РФП Intego 2010, второй – через 45–55 мин. Вводимая активность составляла 300 МБк. Количественную оценку maxSUV проводили offline на рабочей станции SyngoVia с использованием протокола Oncology.
Результаты: Наиболее высокие средние значения накопления РФП (maxSUV1) были получены в анапластических астроцитомах и глиобластомах – 5,07 и 4,89 соответственно, наибольший средний прирост значений maxSUV2 отмечался в глиобластомах – 15,46 %, наиболее низкие значения maxSUV1 были в глиомах GrI – 0,76.
Выводы: ПЭТ/КТ-исследование с использованием различных РФП предоставляет уникальную информацию о функциональном состоянии опухолей по ряду биологических процессов. 18F-холин – это мембранный маркер, который позволяет оценить активность формирования мембраны клетки. В неизмененном веществе головного мозга 18F-холин практически не накапливается. Методика двухэтапного ПЭТ-сканирования с 18F-холином головного мозга у больных с внутримозговыми опухолями позволила предположить степень их злокачественности, которая зависит как от уровня накопления РФП на первом этапе, так и от степени увеличения значения на втором этапе. Таким образом, «прирост» значений maxSUV может иметь прогностическое значение в диагностике опухолевой активности новообразований головного мозга.
Об авторах
М. Б. ДолгушинРоссия
Москва
А. И. Пронин
Россия
Москва
Н. Б. Вихрова
Россия
Москва
Д. И. Невзоров
Россия
Москва
Э. А. Нечипай
Россия
Москва
Е. А. Кобякова
Россия
Москва
Н. А. Мещерякова
Россия
Москва
П. Е. Тулин
Россия
Москва
А. А. Оджарова
Россия
Москва
Список литературы
1. Wester H.J., Herz M., Weber W. et al. Synthesis and radiopharmacology of O-(2-[18F] fluoroethyl)-L-tyrosine for tumor imaging // J. Nucl. Med. 1999. Vol. 40. P. 205–212.
2. Langen K.J., Jarosch M., Muhlensiepen H. et al. Comparison of fluorotyrosines and methionine uptake in F98 rat gliomas // Nucl. Med. Biol. 2003.Vol. 30. P. 501–508.
3. Moore K.R., Harnsberger H.R., Shelton C., Davidson H.C. “Leave me alone” lesions of the petrous apex // Amer. J. Neuroradiol. 1998. Vol. 19. P. 733–738.
4. Pyka T., Gempt J., Hiob D. et al. Textural analysis of pretherapeutic [18F]-FET-PET and its correlation with tumor grade and patient survival in high-grade gliomas // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2016. Vol. 43. P. 133–141.
5. Gauthier S., Diksic M., Yamamoto L. et al. Positron emission tomography with [11C]choline in human subjects // Can. J. Neural. Sci. 1985. Vol. 12. P. 214.
6. De Grado T.R., Baldwin S.W., Wang S. et al. Synthesis and evaluation of 18F-labeled choline analogs as oncologic PET tracers // J. Nucl. Med. 2001. Vol. 42. P. 1805–1814.
7. Haubrich D.R., Wang P.F.L., Wedeking P.W. Distribution and metabolism of intravenously administered choline[methyl-3H] and synthesis in vivo of acetylcholine in various tissues of guinea pigs // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1975. Vol. 193. P. 246–255.
8. Katz-Brull R., Degani H. Kinetics of choline transport and phosphorylation in human breast cancer cells; NMR application of the zero transmethod // Anticancer Res. 1996. Vol. 16. P. 1375–1380.
9. Nakagami K., Uchida T., Ohwada S. et al. Increased choline kinase activity and elevated phosphocholine levels in human colon cancer // Jpn. J. Cancer Res. 1999. Vol. 90. P. 419–424.
10. Ramirez de Molina A., Rodriguez-Gonzalez A., Gutierrez R. et al. Overexpression of choline kinase is a frequent feature in human tumorderived cell lines and in lung, prostate, and colorectal human cancers // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2002. Vol. 296. P. 580–583.
11. Yavin I. Regulation of phospholipid metabolism in differentiating cells from rat brain cerebral hemispheres in culture: patterns of acetylcholine, phosphocholine and choline phosphoglycerides labeling from [C]cholin // J. Biol. 1976. Vol. 251. P. 1392–1397.
12. Slack B.E., Richardson U., Nitsch R.M., Wurtman R.J. Dioctanoylglycerol stimulates accumulation of [methyl’4C]choline and its incorporation into acetylcholine and phosphatidylcholine in a human cholinergic neuroblastoma cell line // Brain Res. 1972. Vol. 585. P. 169–176.
13. Amane S.P., Honig M.A., Milner T.A. et al. Sites of acetylcholine synthesis and release associated with microvessels in cerebral cortex: ultrastructural and neurochemical studies // J. Cereb. Blood Flow Metab. 1987. Vol. 7. P. 5330.
14. Hamel E., Assumel-Lurdin C., Edvinsson L. et al. Neuronal versus endothelial origin of vasoactive acethylcholine in pial vessels // Brain Res. 1987. Vol. 420. P. 391–396.
15. Estrada C., Bready J., Berliner J., Cancilla P.A. Choline uptake by cerebral capillary endothelial cells in culture // J. Neurochem. 1990. Vol. 54. P. 1467–1473.
16. Galea E., Estrada C. Ouabaine-sensitive choline transport system in capillaries isolated from bovine brain // J. Neurochem. 1992. Vol. 59. P. 936–941.
17. Wyss M. T., Spaeth N., Biollaz G. et al. Uptake of 18F-Fluorocholine, 18F-FET, and 18F-FDG in C6 gliomas and correlation with 131I-SIP(L19), a marker of angiogenesis // J. Nucl. Med. 2007. Vol. 48. № 4. P. 608–614.
18. Vanpouille C., Le Jeune N., Kryza D. et al. Influence of multidrug resistance on 18F-FCH cellular uptake in a glioblastoma model // Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 2009. Vol. 36. № 8. P. 1256–1264.
19. Assimakopoulos A., Polyzoidis K., Sioka C. Positron emission tomography imaging in gliomas // Neuroimmunol. Neuroinflammation. 2014. Vol. 1. № 3. P. 107–114.
20. Hara T., Kosaka N., Kishi H. PET imaging of prostate cancer using carbon-11-choline // J. Nucl. Med. 1998. Vol. 39. P. 990– 995.
21. Hara T., Kosaka N., Shinoura N. et al. PET imaging of brain tumor with [methyl-11C]choline // J. Nucl. Med. 1997. Vol. 38. P. 842–847.
22. Hara T., Kosaka N., Kishi H. Development of 18F-fluoroethylcholine for cancer imaging with PET: Synthesis, biochemistry, and prostate cancer imaging // J. Nucl. Med. 2002. Vol. 43. P. 187–199.
23. De Grado T.R., Coleman R.E., Wang S. et al. Synthesis and evaluation of 18F-labeled choline as an oncologic tracer for positron emission tomography: Initial findings in prostate cancer // Cancer Res. 2001. Vol. 61. P. 110–117.
24. Shinoura N., Nishijima M., Hara T. et al. Brain tumors: detection with C-11 choline PET // Radiology. 1997. Vol.202. № 2. P. 497– 503.
25. Kwee S.A., Ko J.P., Jiang C.S. et al. Solitary brain lesions enhancing at MR imaging: evaluation with fluorine 18 fluorocholine PET // Radiology. 2007. Vol. 244. P. 557–565.
26. Ohtani T., Kurihara H., Ishiuchi S. et al. Brain tumour imaging with carbon-11 choline: Comparison with FDG PET and gadolinium-enhanced MR imaging // Eur. J. Nucl. Med. 2001. Vol. 28. P. 1664–1670.
27. Goebell E., Paustenbach S., Vaeterlein O. et al. Low-grade and anaplastic gliomas: Differences in architecture evaluated with diffusion-tensor MR imaging // Radiology. 2006. Vol. 239. P. 217–222.
28. Provenzale J.M., McGraw P., Mhatre P. et al. Peritumoral brain regions in gliomas and meningiomas: investigation with isotropic diffusion-weighted MR imaging and diffusion-tensor MR imaging // Radiology. 2004. Vol. 232. P. 451–460.
29. Burtscher I.M., Skagerberg G., Geijer B. et al. Proton MR spectroscopy and preoperative diagnostic accuracy: An evaluation of intracranial mass lesions characterized by stereotactic biopsy findings // Amer. J. Neuroradiol. 2000. Vol. 21. P. 84–93.
30. Herholz K. Brain tumors: an update on clinical PET research in gliomas // Semin. Nucl. Med. 2017. Vol. 47. P. 5–17.
Рецензия
Для цитирования:
Долгушин М.Б., Пронин А.И., Вихрова Н.Б., Невзоров Д.И., Нечипай Э.А., Кобякова Е.А., Мещерякова Н.А., Тулин П.Е., Оджарова А.А. Возможности ПЭТ/КТ с 18F-холином при глиальных опухолях. Онкологический журнал: лучевая диагностика, лучевая терапия. 2018;1(1):19-23. https://doi.org/10.37174/2587-7593-2018-1-1-19-23
For citation:
Dolgushin M.B., Pronin A.I., Vihrova N.B., Nevzorov D.I., Nechipai E.A., Kobyakova E.A., Meshcheryakova N.A., Tulin P.E., Odzharova A.R. 18F-choline PET/CT in Cerebral Gliomas. Journal of oncology: diagnostic radiology and radiotherapy. 2018;1(1):19-23. (In Russ.) https://doi.org/10.37174/2587-7593-2018-1-1-19-23